研究・活動
研究・活動

国際共同研究プロジェクト「e-ASIA」に参加しています

事業概要

  • アジアを中心とした感染症制御に関する研究および調査
  • 感染症の拡大防止法、検出法、治療法の開発とその支援
  • 感染症制御に関する教育プログラムの充実
  • アジア諸国との感染症制御に関する学術交流と人的交換プログラムの推進

研究内容

アジアを中心とした感染症制御に関する研究を行っています

帝京大学アジア国際感染症制御研究所では、当面インフルエンザウイルスやアシネトバクターなどによる呼吸器感染症を主とし、その検査法、発症機序の解明ならびに治療法開発について研究し、アジア地域での感染症制御を目標としています。

1.感染症制御に関する研究

  • インフルエンザウイルスやアシネトバクターなどの微生物についての解析と検査法
  • アジア地域での感染症：主として呼吸器感染症：インフルエンザ(H5N1)治療、発症機序の解明、治療法開発
  • 感染症予測シミュレーション

2.感染症制御因子に関する研究

  • 好中球機能解析
  • サイトカイン
  • 炎症性因子の解析
  • ＭＰＯ(Myeloperoxidase)の機能の解析

3.感染症誘発の炎症性疾患に関する研究

血管炎などの炎症性疾患は、感染症によって誘発されることや推定の報告があり、これまで、我々はインフルエンザの劇症化が炎症性サイトカインストームによっておこり、また、炎症細胞の関与を明らかにしてきている。これら炎症性細胞・炎症性サイトカインが血管炎の誘発にもかかわっている。日本と欧州との血管炎の疫学調査研究は、国際的に評価されている。

4.「重症肺炎」とその関連の研究：新型インフルエンザウイルスなど

近年、新型インフルエンザウィルスや新型コロナウイルスによる重症肺炎や感染の広がりが世界的な脅威となっている中、具体的なエビデンスを提示することが必要です。ADC研では、これまで、インフルエンザウイルスによる重症肺炎治療薬の候補などの研究を進めてきています。ジョサマイシン／ロイコマイシンやアジスロマイシンといった既存の抗生物質の可能性についても報告しています。

インフルエンザウイルスによる重症肺炎治療薬の候補：ジョサマイシン／ロイコマイシン
Sugamata R, et al.Leucomycin A3 (LM-A3), a 16membered macrolide antibiotic, inhibits Influenza A virus infection and disease progression. J Antibiot (Tokyo). 2014 Mar;67(3):213-22. doi: 10.1038/ja.2013.132. Epub 2014 Feb 5.

インフルエンザウイルス：抗ウイルス薬候補：アジスロマイシン
Tran DH, et al.Azithromycin, a 15-membered macrolide 1 antibiotic, inhibits influenza A(H1N1)pdm09 virus infection by interfering with virus internalization process. J Antibiot (Tokyo). 2019; 72:759-768. doi: 10.1038/s41429-019-0204-x. Epub 2019 Jul 12.

5.国際共同研究・国際交流

国際共同研究

『日本医療研究開発機構（AMED）　e-ASIA JRP』
日本・ベトナム・フィリピン3か国のインフルエンザおよび結核による呼吸器感染症の制御と技術移転および治療法の検討を目的とする。
本研究で日本とベトナム・フィリピンが交流を通じて相互的に取り組むことで、共通の遺伝子タイピングシステムを技術移転し、インフルエンザの重症化因子の解析、従来比較が困難であった結核菌の亜型分布、伝播様式の呼吸器感染症についてアジアの多国間で共有し、臨床疫学情報と対応させることで、国際的なインフルエンザおよび結核感染による呼吸器疾患への対策に資する共同研究モデルとする。
具体的には、ハノイ・国立小児病院と共同で解明してきたH5N1の重症化因子とNS1遺伝子の解析技術をベトナム・フィリピンに技術移転する。日本で確立した重症肺炎治療薬マクロライドの治験の準備とインフルエンザ重症化肺炎の新しい治療薬の開発・治験の準備をする。

【日本側】臨床研究プロトコール作成支援、データベース化、遺伝子、重症化因子を解析する。
【ベトナム側】臨床研究プロトコール作成、承認、患者からの検体採取、臨床疫学データ解析、遺伝子解析の一部を担う。
【フィリピン側】臨床研究プロトコール作成、承認、患者からの検体採取、臨床疫学データ解析、遺伝子解析の一部を担う。

  • ※本プロジェクトは、2015年度より科学技術振興機構から日本医療研究開発機構（AMED）に移行。

国際交流

アジア地域からの大学院生の受け入れ、帝京大学の学生、院生、研修医のアジア地域の施設での感染症の実地研修

所長グループの主任研究プロジェクト

アジアを中心に共同研究を行ってきた「感染症制御に関する研究」や「インフルエンザ劇症化の原因についての解析プロジェクト」を推進しています。また、これまで国際的に評価されている「血管炎の国際疫学および基礎研究プロジェクト」も引き続き協力・支援を行っています。これらのプロジェクト研究は、本研究所メンバーおよび大院生とともに推進しています。また、国内、海外の多数の共同研究者達との連携があるのも本研究所の特長です。

所長グループの主要研究プロジェクト一覧

  • 日本科学振興機構さくらサイエンスプラン（SSP）：2015年度（11月16日-12月4日）
  • 日本医療研究開発機構：e-ASIA JRPプログラム 【代表】日本、ベトナム、フィリピン -2013年度（科学技術振興財団）～現在-
  • 国際臨床研究　血管炎　日本事務局：2件（PEXIVAS, RITARAREM）
  • 文部科学省「インフルエンザ誘導サイトカインストームを制御するウイルス遺伝子ＮＳ１による評価法」2012年度～現在-
  • 厚生労働省：政策創薬事業（血管炎治療） 【研究代表】 -2000年度～現在-
  • 厚生労働省：新興・再興感染症事業 【研究代表2008年度および分科会会長】 -2009年度～現在-
  • 文部科学省：感染症拠点形成（分担者） -2005年度～2007年度-
  • 科学技術振興財団：新興・再興感染症（副代表） -2005年度～2009年度-
  • 経済産業省：感染症―検出機器開発（副代表） -2010年度-
  • ヒューマンサイエンス新興財団：血管炎国際疫学調査 -2004年度～2006年度-、CD69抗体による治療法 -2004年度～2006年度

研究論文

研究論文を多数発表しています

本研究所は英文、和文といろいろな形で研究結果を発表し、研究のさらなる進歩に貢献しています。

和文報告・原著論文

（2015年7月20日 現在）

  1. 鈴木和男　東南アジアのパンデミックインフルエンザおよび危機管理の現状とシミュレーションなどでの対策　旅行学会雑誌 2015.
  2. 猪原登志子、藤本昭一、鈴木和男、遠藤知美、武曽恵理、PEXIVAS-JPグループ　ANCA関連血管炎に対するアフェレシス療法―抗好中球細胞質抗体 関連血管炎に対する血漿交換療法と国際共同臨床試験PEXIVAS―　日本アフェレシス学会雑誌 2015; 34(2): 120-125
  3. 鈴木和男、鈴木浩也　ANCA産生と作用機序:自己抗体モエシン抗体の関与とサイトカインストーム リウマチ科,52(4):1-8, 2014
  4. 白鳥宜孝、島津慎哉、城戸之恵、上野京子、山内由美子、内田れい子、浅海　海、鈴木和男、江口研二、坂本哲也　医療安全教育の一環としておe-Learningの位置づけとその効果　板橋区医師会医学会雑誌 2013; 18: 274-276.
  5. 鈴木和男、上野京子、坂本哲也、Akiko Sasaki, Liem Nguyen　ベトナム・ハノイVIMEC国際病院との【医療安全】についての情報交換　板橋区医師会雑誌　2013; 18: 277-278.
  6. 高尾信一、原 三千丸、岡崎富男、鈴木和男：ヒト呼吸器系ウイルスの検出における呼吸器系ウイルス多項目同時解析アッセイ（Luminex xTAG Respiratory Viral Panel FAST Assay）の有用性の検討 感染症誌85:31-36, 2011.
  7. 原登志子,武田敏也,陶山勝郎,小野孝彦,武曾恵理,篠山重威,橋本ゆき,大川原明子,鈴木和男　糸状体腎炎における好中球機能についての検討　PharmaMedica 19:97-98,2001
  8. 上原至雅、亀井克彦、菊池　賢、槙村浩一、鈴木和男、新見昌一　わが国における深在性真菌症の現状と対策―発生動向に関するアンケート調査の解析からー　The Japanese J. Antibiotics 54: 448-472, 2001
  9. H. Nunoi, M. Miyazaki, F. Koi, and K. Suzuki. Prevalence of Inherited Myeloperoxidase Deficiency in Japan. Molecular Medicine Today.
  10. 坪井泉、小寺宣生、七條茂樹、難波和彦、鈴木和男、横山三男 高分子量Sodium hyaluronate (SL-1010)のヒト好中球機能に及ぼす影響 炎症 13, 55-61, 1993
  11. 笹川澄子、鈴木和男、今中文雄、坂谷達一郎、吉本泰彦、超知義道、藤倉敏夫、蔵本淳 原爆被爆者における多系核白血球の生態防御機能の検討II 粘着および遊走能に対する原爆被爆の後影響 広島医学 39巻434-436, 1986.
  12. 笹川澄子、鈴木和男、今中文雄、坂谷達一郎、藤倉敏夫、蔵本淳 原爆被爆者における多形核白血球の生態防御機能の検討III ライゾーム酵素放出能および活性酸素産生能における原爆被爆の後影響 長崎医学会雑誌 61巻295-300, 1986.
  13. 鈴木和男、Christina Sweson, 笹川澄子、坂谷達一郎、渡辺万里子、小林政夫、藤倉敏夫 N-formyl-methionyl-leucyl-phenylalanineの刺激による多系核白血球のライゾーム酵素放出の加齢に伴う低下 広島医学 38巻298-304, 1985.
  14. 武市宣雄、四元郁子、藤倉敏夫、田中公夫、大北 威、江崎治夫、鈴木和男、若林俊郎、秋山実利、仁保喜之、西亀正之、土肥雪彦、片岡 健、森 雅弘 顆粒球―単核系幹細胞(CFU-C)の動態 広島医学 37巻469-472, 1984.
  15. 鈴木和男、吉本泰彦、笹川澄子、坂谷達一郎、藤倉敏夫、浜田忠雄 T, B-リンパ球の増殖及び細胞分裂阻害に対する原爆被爆の後影響 長崎医学会誌59巻282-287, 1984.

英文原著論文

（2015年7月20日 現在）

  1. Okochi1 Y, Aratani Y, Adissu HA, Miyawaki N, Sasaki M, Suzuki K, Okamura Y. The voltage-gated proton channel Hv1/VSOP inhibits neutrophil granule release. J Leuko Biol. 2015; in press.

  2. Hirahashi J, Kawahata K, Arita M, Iwamoto R, Hishikawa K, Honda M, Hamasaki Y, Tanaka M, Okubo K, Kurosawa M, Takase O, Nakakuki M, Saiga K, Suzuki K, Kawachi S, Tojo A, Seki G, Marumo T, Hayashi M, Fujita T. 

    Immunomodulation with eicosapentaenoic acid supports the treatment of autoimmune small-vesselvasculitis. Scientific Rep 4 : 6406 | DOI: 10.1038/srep06406

  3. Hamano Y, Abe M. Matsuoka S, Zhang D, Kondo Y, Kagami Y, Ishigami A, Maruyama N, Tsuruta Y, Yumura W, Suzuki K. Susceptibility QTLs for pathogenic leukocytosis in SCG/Kj mice, a spontaneously occurring crescentic glomerulonephritis and vasculitis model. Clin Exp Immunol. 2014 Jul;177(1):353-65. doi: 10.1111/cei.12333.

  4. Ellen F. Carney. VASCULITIS: Potential role of an antimoesin autoantibody in AAV Nature Reviews Nephrology 2014; 10:3.

  5. Sugamata R, Sugawara A, Nagao T, Suzuki K, Hirose T, Yamamoto K, Oshima M, Kobayashi K, Sunazuka T, Akagawa KS, Omura S, Nakayama T, Suzuki. Leucomycin A3 (LM-A3), a 16-membered macrolide antibiotic, inhibits Influenza A virus infection and disease progression. J Antibiot (Tokyo). 2014 Mar;67(3):213-22. doi: 10.1038/ja.2013.132. Epub 2014 Feb 5.

  6. Shiga Y, Sugamata R, Iwamura C, Nagao T, Zao J, Kawakami K, Kawachi S, Nakayama T, Suzuki K. Effect of invariant natural killer T cells with IL-5 and activated IL-6 receptor in ventilator-associated lung injury in mice. Exp Lung Res. 2014 Feb;40(1):1-11. doi: 10.3109/01902148.2013.854518. Epub 2013 Nov 18.

  7. Suzuki K, Nagao T, Itabashi M, Hamano Y, Sugamata R, Yamazaki Y, Yumura W, Tsukita S, Wang PC, Nakayama T, Suzuki K. A novel autoantibody against moesin in the serum of patients with MPO-ANCA-associated vasculitis. Nephrol Dial Transplant. 2014 Jun;29(6):1168-77. doi: 10.1093/ndt/gft469. Epub 2013 Dec 5.

  8. Suzuki K. Remarks on the Asia Pacific Meeting of Vasculitis and ANCA Workshop 2012. Clin Exp Nephrol. 2013; Issue 5; 17: 599-602

  9. Suzuki K, Suzuki K, Nagao T, Nakayama T. Proposal of anti-moesin as a novel biomarker for ANCA-associated vasculitis. Clin Exp Nephrol. 2013; Issue 5; 17: 638-41.

  10. Nagao T, Kusunoki R, Iwamura C, Kobayashi S, Yumura W, Kameoka Y, Nakayama T, Suzuki K. Correlation of Interleukin-6 and monocyte chemotactic protein-1 levels with the crescent formation and myeloperoxidase-specific anti-neutrophil cytoplasmic antibody titer in SCG/Kj mice by treatment with anti-interleukin-6 receptor antibody or Mizoribine. Microbiol Immunol. 2013 Sep;57(9):640-50. doi: 10.1111/1348-0421.12080.

  11. Tateno N, Matsumoto N, Motowaki T, Suzuki K, Aratani Y. Myeloperoxidase deficiency induces MIP-2 production via ERK activation in zymosan-stimulated mouse neutrophils. Free Radic Res. 2013 May;47(5):376-85. doi: 10.3109/10715762.2013.778990. Epub 2013 Mar 22.1.

  12. Martinez HG, Quinones MP, Jimenez F, Estrada C, Clark CM, Suzuki K, Miura N, Ohno N, Ahuja SK, Ahuja SS. Important role of CCR2 in a murine model of coronary vasculitis. BMC Immunology 2012; 13:56_pp1-12.

  13. Nakajima N, Ngo VT, Sato Y, Hoang NT, Katano H, Pho HD, Kumasaka T, Nguyen TT, Hasegawa H, Long TS, Kawachi S, Nguyen TL, Suzuki K, Sata T, Pathological study of archival lung tissues from 5 fatal cases of avian H5N1 influenza in Vietnam. Modern Pathol 2013; Mar;26(3):357-69. doi: 10.1038/modpathol.2012.193. Epub 2012 Nov 23.

  14. Yamanishi Y, Ito-Ihara T, Nagao T, Uno K, Kobayashi S, Muso E, Shane PY, Firestein GS, Hashimoto H, Okazaki T, Suzuki K. Clinical features of patients with anti-neutrophil cytoplasmic autoantibodies targeting native myeloperoxidase antigen. Mod Rheumatol. 2013 Sep;23(5):963-71. doi: 10.1007/s10165-012-0781-z. Epub 2012 Oct 21.

  15. Hayashi D, Tamura A, Tanaka H, Yamazaki Y, Watanabe S, Suzuki K, Suzuki K, Sentani K, Yasui W, Rakugi H, IsakaY, Tsukita S. Defiency of claudin-18 causes paracellular H+ leakage, up-regulation of interleukin-1 beta, and atrophic gastritis in mice. Gastroenterology, 2012 Feb;142(2):292-304. Epub 2011 Nov 10.

  16. Sugamata R, Dobashi H, Nagao T, Yamamoto K, Nakajima N, Sato Y, Aratani Y, Oshima M, Sata T, Kobayashi K, Kawachi S, Nakayama T, Suzuki K. The contribution of neutrophil-derived myeloperoxidase in the early phase of fulminant acute respiratory distress syndrome induced by influenza virus infection. Microbiol Immunol. 2012 Mar;56(3):171-82.

  17. Koshio O, Nagao T, Mabuchi A, Ono Y, Suzuki K. Apoptotic signaling in endothelial cells with neutrophil activation. Mol Cell Biochem. 2012 Apr;363(1-2):269-80. doi: 10.1007/s11010-011-1179-5. Epub 2011 Dec 24.

  18. Fujimori Y, Sato T, Hayata T, Nagao T, Nakayama M, Nakayama T, Sugamata R, Suzuki K. Novel antiviral characters of nanosized copper(I) iodide particles showing inactivation activity against 2009 pandeminc H1N1 influenza virus. Appl Environ Microbiol. 2012 Feb;78(4):951-5.

  19. Takeuchi K, Umeki Y, Matsumoto N, Yamamoto K, Yoshida M, Suzuki K, Aratani Y. Severe neutrophil-mediated lung inflammation in myeloperoxidase-deficient mice exposed to zymosan. Inflammation Res. 2012; Mar;61(3):197-205.

  20. Phung TTB, Sugamata R, Uno K, Aratani Y, Ozato K, Kawachi S, Nguyen LT, Nakayama T, Suzuki K. Key role of RANTES (regulated upon activation normal T-cell expressed and secreted), nonstructural protein1 and myeloperoxidase in cytokine storm induced by influenza virus PR-8(A/H1N1) infection in A549 bronchial epithelial cells. Microbiol Immunol. 2011; Dec; 55(12):874-884.

  21. Takahashi K, Oharaseki T, Nagao T, Yokouchi Y, Yamada H, Nagi-Miura N, Ohno N, Saji T, Okazaki T, Suzuki K. Mizoribine provides effective treatment of sequential histological change of arteritis and reduction of inflammatory cytokines and chemokines in an animal model of Kawasaki disease. Pediatric Rheumatol. 2011; 9:30-39.

  22. Fujimoto S, Watts RA, Kobayashi S, Suzuki K, Jayne DR, Scott DG, Hashimoto H, Nunoi H. Comparison of the epidemiology of anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis between Japan and the U.K. Rheumatology (Oxford). 2011 Oct;50(10):1916-20.

  23. Nagao T, Suzuki K, Utsunomiya K, Matsumura M, Saiga K, Wang PC, Minamitani H, Aratani Y, Nakayama T, Suzuki K. Direct activation of glomerular endothelial cells by anti-moesin activity of anti-myeloperoxidase antibody. Nephrol Dial Transplant. 2011; Sep 26(9):2752-2760.

  24. Igari H, Watanabe A, Chiba H, Shoji K, Segawa S, Nakamura Y, Watanabe M, Suzuki K, Sato T. Effectiveness and safety of pandemic influenza A (H1N1) 2009 vaccine in healthcare workers at a university hospital in Japan. Jpn J Infect Dis. 2011;64(3):177-82.

  25. Kawachi S, Matsushita T, Sato T, Nunoi H, Noguchi H, Ota S, Kanemoto N, Nakatani K, Nishiguchi T, Yuge A, Imamura H, Kitajima H, Narahara K, Suzuki K, Miyoshi-Akiyama T, Kirikae T. Multicenter prospective evaluation of a novel rapid immunochromatographic diagnostic kit specifically detecting influenza A H1N1 2009 virus. J Clin Virol. 2011; 51:68–72.

  26. Phung TTB, Luong ST, Kawachi S, Nunoi H, Nguyen LT, Nakayama T, Suzuki K. IL-12 and myeloperoxidase (MPO) in Vietnamese children with acute respiratory distress syndrome and induced avian influenza (H5N1) infection. J Infect. 2011; 62: 104-108.

  27. Aoyagi T, Yamamoto N, Hatta M, Tanno D, Miyazato A, Ishii K, Suzuki K¸ Nakayama T, Taniguchi M, Kunishima H, Hirakata Y, Kaku M, Kawakami K. Activation of pulmonary invariant NKT cells lead to exacerbation of acute lung injury caused by lipopolysaccharide through local production of IFN-γ and TNF-α by Gr-1+ monocytes. Int Immunol. 2011; 23:97-108.

  28. Furuya H, Kawachi S, Shigematsu M, Suzuki K, Watanabe T. Clinical factors associated with severity in hospitalized children infected with avian influenza (H5N1). Environ Health Prev Med. 2011; 16:64-68.

  29. Dang MH, Kato H, Ueshiba H, Omori-Miyake M, Yamagoe S, Ando K, Imanishi K, Arimura Y, Haruta I, Kotani T, Ozaki M, Suzuki K, Uchiyama T, Yagi J. Possible role of LECT2 as an intrinsic regulatory factor in SEA-induced toxicity in d-galactosamine-sensitized mice. Clin Immunol. 2010 Dec;137(3):311-21.

  30. Yasuda H, Yoshizawa N, Matsumoto M, Kawachi S, Suzuki K. Transmission of Pandemic H1N1 Influenza in Japan in 2009: Simulated Measures and Post-Analysis. EASIAM Conference 2010; 6:110-116.

  31. Igari H, Segawa S, Watanabe A, Suzuki A, Watanabe M, Sakurai T, Kuroda F, Watanabe M, Tatsumi K, Nakayama M, Nakayama T, Suzuki K, Sato T. Immunogenicity of a monovalent pandemic influenza AH1N1 vaccine in healthcare workers. Microbiol Immunol. 2010; 54: 618–624.

  32. Kobayashi S, Fujimoto S, Takahashi K, Suzuki K. Anti-neutrophil cytoplasmic antibody-associated vasculitis, large vessel vasculitis and kawasaki disease in Japan. Kidney Blood Press Res. 2010;33(6):442-55.

  33. Basu N, Watts R, Bajema I, Baslund B, Bley T, Boers M, Brogan P, Calabrese L, Cid CM, Cohen-Tervaert JW, Flores-Suarez LF, Fujimoto S, de Groot K, Guillevin L, Hatemi G, Hauser T, Jayne D, Jennette C, Kallenberg CGM, Kobayashi S, Little MA, Mahr A, McLaren J, Merkel PA, Ozen S, Puechal X, Rasmussen N, Salama A, Salvarani C, Savage C, Scott DGI, Segelmark M, Specks U, Sunderköetter C, Suzuki K, Tesar V, Wiik A, Yazici H, Luqmani R. EULAR points to consider in the development of classification and diagnostic criteria in systemic vasculitis. Ann Rheum Dis. 2010; 69:1744-50.

  34. Tomizawa K, Nagao T, Kusunoki R, Saiga K, Oshima M, Kobayashi K, Nakayama T, Tanokura M, Suzuki K. Reduction of MPO-ANCA epitopes in SCG/Kj mice by 15-Deoxyspergualin treatment restricted by IgG2b associated with crescentic glomerulonephritis. Rheumatology (Oxford). 2010;49:1245-56.

  35. Suzuki Y, Takeda Y, Sato D, Kanaguchi Y, Tanaka Y, Kobayashi S, Suzuki K, Hashimoto H, Ozaki S, Horikoshi S, Tomino Y. Clinicoepidemiological manifestations of RPGN and ANCA-associated vasculitides: an 11-year retrospective hospital-based study in Japan. Mod Rheumatol. 2010; 20:54-62.

  36. Takahashi K, Oharaseki T, Nagai-Miura N, Ohno N, Ishida-Okawara A, Yamada H, Kaneshiro Y, Naoe S, Suzuki K. Administration of human immunoglobulin inhibited development of vasculitis in a murine model of vasculitis induced with CAWS, Candida albicans water soluble fraction. Modern Reumatol. 2010; 20:160–167

  37. Yasuda H, Suzuki K. Measures against transmission of pandemic H1N1 influenza in Japan in 2009: simulation model. Euro Surveill. 2009;14: 12-18.

  38. Hatta M, Yamamoto N, Miyazato A, Ishii N, Nakamura K, Inden K, Aoyagi T, Kunishima H, Hirakata Y, Suzuki K, Kaku M, Kawakami K. Early production of tumor necrosis factor- by Gr-1 cells and its role in the host defense to pneumococcal infection in lungs. FEMS Immunol Med Microbiol 2010; 58:182-92.

  39. Hasegawa A, Hayashi K, Kishimoto H, Yang M, Tofukuji S, Suzuki K, Nakajima H, Hoffman R, Shirai M, Nakayama T. Color-coded real-time cellular imaging of T lymphocyte accumulation and focus formation in mouse asthma model. J Allergy Clin Immunol. 2010; 125:461-8.

  40. Osaki Y, Maehara Y, Sato M, Hoshino A, Yamamoto K, Nagao T, Suzuki K, Kawach S. Analysis of cytokines in broncho-alveolar lavage fluids of patients with ARDS: Increase of IL-6, G-CSF, MCP-1, MIP-1β. JJSICareMed 2010; 17:179-184.

  41. Hirahashi J, Hishikawa K, Kaname S, Tsuboi N, Wang Y, Simon DI, Stavrakis G, Shimosawa T, Xiao L, Nagahama Y, Suzuki K, Fujita T, Mayadas TN. Mac-1 (CD11b/CD18) Links Inflammation and Thrombosis After Glomerular Injury. Circulation 2009; 120:1255-65.

  42. Miura NN, Komai M, Adachi Y, Osada N, Kameoka Y, Suzuki K, Ohno N. IL-10 is a negative regulatory factor of CAWS-vasculitis in CBA/J mice as assessed by comparison with Bruton's tyrosine kinase-deficient CBA/N mice. J Immunol 2009; 183:3417-3424.

  43. Kawachi S, Luong ST, Shigematsu M, Furuya H, Phung TTB, Phan PH, Nunoi H, Nguyen LT, Suzuki K. Risk parameters of fulminant acute respiratory distress syndrome followed by avian influenza (H5N1) infection in Vietnamese children. J Infectious Dis 2009; 200: 510-515.

  44. Kaga C. Nomura S, Okochi M, Nozu T, Nagao T, Nagai A, Nakayama T, Suzuki K, Honda H. Screening of epithelial cell-adhesive peptides from fibronectin loop region and its cell specificity. J Chem Engineering Japan 2009; 4:298-302.

  45. Nozu T, Kondo M, Suzuki K, Tamaoki J, Nagai A. A comparison of the clinical features of ANCA-positive and ANCA-Negative idiopathic pulmonary fibrosis patients. Respiration 2009;77:407-415.

  46. Ito-Ihara T, Muso E, Kobayashi S, Uno K, Tamura N, Yamanishi Y, Fukatsu A, Watts RA, Scott DGI, Jayne DRW, Suzuki K, Hashimoto H. A comparative study of the diagnostic accuracy of ELISA systems for the detection of anti-neutrophil cytoplasm antibodies available in Japan and Europe. Clin Exp Rheumatol 2008; 26:1027-1033.

  47. Yasuda Y, Shimoda T, Uno K, Tateishi N, Furuya S, Yagi K, Suzuki K, Fujita S. The effects of MPTP on the activation of microglia/astrocytes and cytokine/chemokine levels in different mice strains. J Neuroimmunol 2008; 204:43-51.

  48. Ramadan MM, Tachikawa H, Kodama M, Okawara A, Mitsuma W, Ito M, Kashimura T, Ikrar T, Hirono S, Okura Y, Suzuki K, Aizawa Y. A pilot-controlled study of myeloperoxidase-specific anti-neutrophil cytoplasmic autoantibody (MPO-ANCA) in the coronary circulation. Int J Cardiol 2008;128:114-116.

  49. Watts RA, Scott DGI, Jayne DRW, Ito-Ihara T, Muso E, Fujimoto S, Harabuchi Y, Kobayashi S, Suzuki K, Hashimoto H. Renal vasculitis in Japan and the UK - are there differences in epidemiology and clinical phenotype? Neprol Dialysis Transplant 2008; 23:3928-3931.

  50. Kobayashi S, Ito A, Okuzaki D, Onda H, Yabuta N, Nagamori I, Suzuki K, Hashimoto H, Nojima H. Expression profiling of PBMC-based diagnostic gene markers isolated from vasculitis patients. DNA Research 2008; 15:253-265.

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総説

（2015年7月20日 現在）

  1. 鈴木和男、鈴木浩也　ANCA産生と作用機序：自己抗体モエシン抗体の関与とサイトカインストーム　リウマチ科 2014
  2. 鈴木和男　血管炎発症のメカニズム：ANCAと好中球ライソゾーム酵素MPOの関与「Annual review 2012」
  3. 高橋啓、鈴木和男、佐地　勉　川崎病の名前が変わる？-Chapel Hill Consensus Conference on Vasculitis Nomenclature 2011会議から- 日本小児循環器学会雑誌 27(6) 253-256, 2011
  4. 鈴木和男MPO-ANCA関連血管炎モデルの血管内皮細胞傷害機構『炎症と免疫』特集II「顕微鏡的多発動脈炎」vol 19, No. 6 (2011.11 (10/20発行)
  5. Kobayashi, S. Fujimoto, K. Takahashi, K. Suzuki. [Review] ANCA-associated vasculitis, large vessel vasculitis and Kawasaki disease in Japan. Kidney Blood Press Res 2010;33:442-455 (DOI: 10.1159/000320383)
  6. 小林茂人、藤元昭一、鈴木和男　「難治性血管炎調査研究班」研究からー血管炎の分類に関する世界的動向　「脈管学」Vol . 51(1) 73-77,　2011年4月
  7. 鈴木和男、猪原登志子、長尾朋和　第二章　疾患概念　ANCAの意義「ANCA関連血管炎の診療ガイドライン」尾崎承一、槇野博史、松尾精一編　「厚生労働省　難治性疾患克服研究事業」pp11-14, 2011,　2月
  8. 鈴木和男、長尾朋和　ANCA関連血管炎―臓器別にみた最近の話題 ７．血管炎について最近の話題―基礎研究の立場から　「医学のあゆみ」医歯薬出版（株）2011年3月号 236巻8号　2011年2月19日　p.791-798
  9. 長尾朋和、鈴木和男 ANCA関連血管炎とNeutrophil Extracelular Traps(NETs、好中球細胞外補足構造) リウマチ科（科学評論社）2010年4月号、43:414-419.
  10. 長尾朋和、鈴木和男 MPO-ANCA関連血管炎と血管内皮細胞 「腎臓と透析」東京医学社 2010年１月号、68: 89-93.
  11. 橋本博史、小林茂人、藤元昭一、湯村和子、高橋啓、猪原登志子、平橋淳一、鈴木和男：血管炎の新分類基準、新治療や発症機構研究の世界的動向（後編）。日本医事新報No.4472:46-52, 2010
  12. 橋本博史、小林茂人、藤元昭一、湯村和子、高橋啓、猪原登志子、平橋淳一、鈴木和男：血管炎の新分類基準、新治療や発症機構研究の世界的動向（前編）。日本医事新報No.4470:43-51, 2009
  13. 鈴木和男　ナノ粒子の知恵の塊-ドラッグデリバリーシステムのイメージング　技術評論社刊「光る生き物―ここまで進んだバイオイメージング技術」pp140-153、2009年11月1日
  14. 長尾朋和、鈴木和男「ANCA関連血管炎」ANCA関連血管炎―発症機構解析・モデルマウス・新たな治療法―炎症と免疫(先端医学社)、2009年17巻(6)11月 707-713
  15. 鈴木和男、安田英典:「わが国の新型インフルエンザの影響予測とその対策」, インフルエンザ（メディカルレビュー社）, 10, 143-149, (2009.4)
  16. 鈴木和男　ANCA関連血管炎モデルマウスの新知見 「脈管学」メディカルトリビューン社J Jpn Coll Angiol, 2009; 49:21-29.
  17. 長尾朋和、鈴木和男「好中球機能異常による血管炎・腎炎」、細胞(ニューサイエンス社)、2009. 41(2)、60-63
  18. 鈴木和男　人工ガンマグロブリン製剤の開発の現状　ファルマシア 45: 17-22, 2009年1月、日本薬学会
  19. 鈴木和男　感染症を抑え込め：大規模予測モデル「感染症の脅威：パンデミックへの備えは万全か」日経サイエンス別冊163, pp38-46, 2008年11月、日経サイエンス社
  20. 鈴木和男　シミュレーションによる感染症の対策支援「感染症の脅威：パンデミックへの備えは万全か」日経サイエンス別冊163, pp47-52, 2008年11月、日経サイエンス社
  21. 長尾朋和、鈴木和男「ANCAをめぐる基礎的研究の進歩」「呼吸器科」（科学評論社）2008年；14(4)348-354.
  22. 鈴木和男、河内正治　特集「ARDSとインフルエンザ－呼吸器不全の病態と発症機構ー」「はじめに」　医学のあゆみ　224巻 11号、813-814（2008年3月15日号）
  23. 鈴木和男　特集「ARDSとインフルエンザ－呼吸器不全の病態と発症機構ー」「インフルエンザによる呼吸器不全に関与するPeroxidaseファミリー」　医学のあゆみ　224巻 11号、835-837（2008年3月15日号）
  24. 安田英典、鈴木和男　特集「ARDSとインフルエンザ－呼吸器不全の病態と発症機構ー」「インフルエンザの拡大シミュレーション」　医学のあゆみ　224巻 11号、863-864（2008年3月15日号）
  25. Kazuko Uno, Eri Muso, Toshiko Ihara, Katsumi Yagi, Setsuya Fujita, Kazuo Suzuki. MPO-ANCA腎炎のサイトカイン・ケモカイン動態Cytokine/chemokine analysis in plasma of patients with MPO-ANCA nephritis. Pasken J 2007; 20:1-5.
  26. 鈴木和男　血管炎の病態と好中球　臨床検査　51巻 1071-1080, 2007
  27. 安田英典、鈴木和男　「感染症伝播のシミュレーション」生体防御医学辞典（鈴木和男 監修、朝倉書店）pp76-80, 2007
  28. 鈴木和男　「好中球の機能調節」生体防御医学辞典（鈴木和男 監修、朝倉書店）164-169, 2007
  29. 大川原明子、長尾朋和、鈴木和男　血管炎の発症にかかわる分子と好中球」　生体防御医学辞典（鈴木和男 監修、朝倉書店）309-312, 2007
  30. 鈴木和男　血管炎治療のための人工ガンマグロブリンの開発に関する研究　人工血液
  31. 湯村和子、板橋美津世、今澤俊之、丸山直記、鈴木和男、老化と腎－免疫機能－．腎と透析、60: 987-991, 2006.
  32. 鈴木和男　好中球自己抗体ＭＰＯ－ＡＮＣＡの病原性と血管炎の病態　日本臨床免疫学会誌２９巻第２号 pp94-101, 2006年４月
  33. 鈴木和男　血管炎発症機構におけるCD69分子を介する好中球・血小板相互反応 血栓止血誌　17巻2号 223-229, 2006年４月
  34. 鈴木和男　話題：血管炎と好中球Myeloperoxidase リウマチ科　34巻　５号 pp549-558, 2005,11月
  35. 鈴木和男　免疫の分子機構―「顆粒球」：好中球、好酸球、好塩基球 「免疫学ハンドブック」（オーム社）第２部　第９章　pp182-195, 2005, 10月
  36. 鈴木和男「感染症を抑え込め：大規模予測モデルの実力ー監訳」日経サイエンス2005年6月号pp66-75.
  37. 鈴木和男　血管炎と好中球Myeloperoxidase　リウマチ科 34:549-258, 2005.
  38. 鈴木和男　第一土曜特集：「血管炎の基礎と臨床」６．ANCA関連血管炎における好中球の関与「医学のあゆみ」214:31-37, 2005.
  39. 村山　研、長尾朋和、鞍馬秀輝、長谷川明洋、船津高志、南谷晴之、新井孝夫、中山俊憲、鈴木和男　血管炎における活性化好中球のCD69分子　Pharma Medica 23, 92-93, 2005
  40. 鈴木和男　MPO-ANCA関連血管炎のモデル動物　炎症と免疫　13巻473-479, 2005, ４月
  41. 鈴木和男　好中球Myeloperoxidase　感染・炎症・免疫　35巻12-23, 2005, ４月
  42. 鈴木和男　バイオイメージングが切り開く新たな診断・治療評価技術　医学のあゆみ２１０巻171, ２００４年７月
  43. 長尾朋和、鈴木和男　血管炎初期反応のイメージング 医学のあゆみ２１０巻196-199, ２００４年７月
  44. 長尾朋和、村山　研、越尾　修、大野尚仁、三浦典子、高橋　啓、馬渕綾子、南谷晴之、鈴木和男　腎臓血管傷害のイメージング　PharmaMedica22: 185-189, 2004、2004年、５月
  45. 大川原明子、猪原登志子、小野孝彦、武曾恵理、雑賀　寛、根本久一、鈴木和男：糸球体腎炎の発症、進行における好中球活性化の役割―モデルとしてのSCG/Kjマウスを用いた解析―　「腎とフリーラジカル第７集」pp66-72, 2003年8月.
  46. 鈴木和男　血管炎をめぐる世界の動き「医学のあゆみ」206:123-126, 2003
  47. 鈴木和男　血管炎発症機構の解析研究―活性化好中球の関与「医学のあゆみ」206:133-139, 2003
  48. 鈴木和男　ANCA関連血管炎の発症機序―活性化好中球の関与―リウマチ科 29:228-236, 2003.
  49. 大川原明子、鈴木和男、猪原登志子、小野孝彦、武曾恵理、雑賀　寛、根本久一：半月体形成性腎炎モデルとしてのSCG/Kjマウスの好中球機能　Pharma Medica 21: 157-161, 2003.
  50. 鈴木和男：SCG/KjマウスとANCA関連血管炎―血管炎病態に関与する好中球機能：動物モデルを用いた　解析からーリウマチ科 28:560-577, 2002
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  55. 鈴木和男　腎炎・血管炎の病態と好中球自己抗体MPO-ANCA　Pharma Medica （メデイカルビュー社） 17巻223-234, 1999.
  56. 鈴木和男　Mini Review: 血管炎に関与するMPO-ANCA (好中球細胞質自己抗体）のエピトープ　炎症 18, 407-418, 1998
  57. 鈴木和男　MPO-ANCA：好中球細胞質自己抗体　好中球ー機能低下と機能亢進ー笹田昌孝編 医薬ジャーナル社 194-219, 1998
  58. 鈴木和男　「新しい肝臓生物学をめざして」 肝胆膵 ９８年７月号 特集
  59. 鈴木和男　総説 「好中球細胞質自己抗体（ＡＮＣＡ）と組織機能障害ーMPO-ANCAを中心に」　臨床免疫 30, 358-369, 1997.
  60. 鈴木和男　VIII免疫疾患 2 好中球細胞質自己抗体ーＡＮＣＡー Annual Review1998 中外医学社 266 - 278, 1997.
  61. 鈴木和男　いろいろな分野でのバイオイメージングの利用 蛋白質・核酸・酵素 42, 1179ー1180, 1997.
  62. 鈴木 貢、鈴木和男鈴木和男　画像解析装置IMRAS 蛋白質・核酸・酵素 42, 1158ー1162, 1997
  63. 山越　智、岡部智也、鈴木和男鈴木和男　サイトカインによる好中球活性化 蛋白質・核酸・酵素 42, 1086ー1091, 1997.
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  71. 鈴木和男、内田隆史、坂田達一郎、笹川澄子、保坂俊太郎、藤倉敏夫、多形核白血球の貪食能とそれに伴うライゾーム酵素放出の簡便測定法 医学のあゆみ 132, 741-745, 1985.
  72. 鈴木和男 多系核白血球貪食作用の画像解析バイオトレンド 1巻154-156, 1989.
  73. 鈴木和男 多系核白血球／好中球のはたらき：多系核白血球の生態防御での役割LUCT/インターロイキン8を中心として Cell Science 6, 450-461, 1990.
  74. 鈴木和男 インターロイキン8 臨床免疫 22, 140-146, 1990.
  75. 鈴木和男、堀田国元 がん細胞の産生する好中球走化性因子はLUCT/インターロイキン8 血液・腫瘍科 22, 108-115, 1990.
  76. 鈴木和男 インターロイキン8 検査と技術 19, 880-881, 1991.
  77. 鈴木和男 がん細胞の産生するIL-8 Biomedica 6, 725-729, 1991.
  78. 大川原明子、鈴木和男　好中球からのMyeloperoxidase放出阻害剤Aseanostatin　炎症　12, 55-61, 1992.

著書（刊行図書）

（2015年7月20日 現在）

  1. 鈴木和男 朝倉書店　インフルエンザ「免疫の事典」p66,  2011
  2. 鈴木和男 朝倉書店　「生体防御医学事典」監修
  3. 鈴木和男 広川書店　血管炎　好中球ＭＰＯ－ＡＮＣＡ
  4. 鈴木和男、内田隆史  多形核白血球の貪食能とライゾーム酵素放出：酵素基質結合微粒子を用いた簡便法  免疫実験操作法 Ⅷ4377-4384, 1984.
  5. 鈴木和男  多系核白血球の走化性因子とそのレセプター  日本臨床臨時増刊 "Receptor" 534-538, 1989.
  6. 鈴木和男  ミエロペルオキシダーゼ  腎臓Key Notes  長澤俊彦編  90, 1992.

国際交流

帝京大学アジア国際感染症制御研究所では、アジア地域での感染症の研究分野で多数の業績をあげ、2014年より、ベトナム（一部ラオス）およびフィリピンの参加施設の研究・技術の向上をめざし、呼吸器疾患にかかわる感染症を推進しています。現在では、文部科学省・国費留学生（医学研究科）を受け入れ、インフルエンザの劇症化機構に関わる分子機構の解明を進めています。また、帝京大学アジア国際感染症制御研究所外の結 核研究所、北里研究所、国立感染症研究所、国立国際医療研究センター、東京大学医科学研究所の研究者らとともに、国際交流を推進しています。また、アジア諸国との国際交流として、帝京大ＡＤＣ研さくらサイエンスプロジェクト（TASP）を推進しています。

帝京大ADC研さくらサイエンスプロジェクト（TASP）

1.招聘プラン：日本科学振興機構さくらサイエンスプラン（SSP）と連携した感染症制御に関する共同研究の実施。

ベトナムおよびフィリピンの参加施設の研究・技術の向上を目指すための共同研究として位置づけ、以下の3項目の研修を行います。

  1. バイオセーフティー
  2. ウイルス・細菌検出の最新技術
  3. 公衆衛生・疫学

ベトナム、フィリピンおよびラオスからの参加施設の研究・技術の向上をはかり、共同研究の推進をめざす。研究支援：講師・技術指導は、帝京大学アジア国際感染症制御研究所をはじめ、結核研究所、北里研究所、国立感染症研究所、国立国際医療研究センター、東京大学医科学研究所のトップクラスの研究者・医師・技術スタッフが支援する。

ベトナム、フィリピン、ラオスの３ヵ国から7名の研修生を受け入れ、研修プログラムを実施しました

2015年11月16日から12月4日にかけて、JST（科学技術振興機構）の採択事業である「さくらサイエンスプラン」が実施され、ADCがベトナム、フィリピン、ラオスの３ヵ国から7名の研修生を受け入れました。今回の研修では研究者として自国で活躍する7名が来学し、「感染症」と「安全管理」をテーマに、帝京大学医学部附属病院安全管理部での医療安全の講演会、 ラウンド、中央検査部や薬剤部の視察、そして本学研究施設の見学、また最新のウイルスや細菌検出技術の実習体験や授業への参加など、本学の教員や学生と交 流を深めました。また、ADC研と連携している結核研究所（東京都清瀬市）も訪問しました。

2.派遣プラン：帝京大学の学生、大学院生、教員のアジア諸国への感染症制御に関する調査・研究の派遣。

研究支援

帝京大学アジア国際感染症制御研究所では、微生物および炎症マーカー解析支援（有料）を行っております。

対象

インフルエンザ、サイトカイン、他

申請書

解析依頼申請書

お問い合わせ

帝京大学アジア国際感染症制御研究所

TEL
03-3964-8420（直通）、03-3964-1211（代表）
E-mail
office-adc@med.teikyo-u.ac.jp